Laboratóriumi egerek helmintjai


Látták: Átírás 1 Paraît.

laboratóriumi egerek helmintjai

Hung Vegyületek antheimintikus hatásának felderítésére végzett hazai vizsgálatok féregmodelleken TAKÁTS Csilla Az Allatorvostudománvi Egyetem Parazitológiai Tanszékének Helmintológiai Kutató Laboratóriuma, Budapest A gyógyszeripar világszerte nagy erőfeszítéseket tesz ujabb, az eddigieknél hatékonyabb anthelmintikumok szintetizálására. Mivel a paraziták biokémiája és a gyakorlatban is használt kiváló anthelmintikumok hatásmechanizmusa is kevéssé ismert, még a modern laboratóriumok számára is gondot okoz és időigényes munkával jár l - l uj antheimintikus hatású vegyület felfedezése.

Az ilyen célú tevékenység első lépéseiként a különböző szkriningvizsgálatok terjedtek el. Az antheimintikus tulajdonságú vegyületek kiválogatása a következő munkafolyamatban valósulhat meg: 1.

Navigációs menü

In vitro szkrinelés. Bár az in vitro technika metodikailag sokkal egyszerűbb és olcsóbb, mint laboratóriumi egerek helmintjai in vivo technika, mégsem terjedt el olyan mértékben, mint az utóbbi. Ennek a laboratóriumi egerek helmintjai között az is az oka, hogy mig például a baktériumok és a gombák gyermekek férgekhez tartozó gyógyszerek listája vitro eredményesen és tömegesen tenyészthetők, addig a parazita férgek a gazdaszervezet nélkül alig vagy egyáltalán laboratóriumi egerek helmintjai állithatók elő.

In vivo primer szkrinelés. Az antheimintikus hatású vegyületek elsődleges kiválogatására manapság a gazda-féregmodelleken történő vizsgálatok terjedtek el. E vizsgálatok lényege az,hogy a kivánt féregfajjal mesterségesen fertőzött laboratóriumi gazdaállatot kezeljük a vizsgálandó kémiai anyaggal, ós a hatékonyságot a kezelt állatokban talált átlagos féregszámnak a kezeletlen, kontrollcsoportbeli állatok átlagos féregszámához való viszonyítása alapján biráljuk el.

23. évf. 4. sz. / 1968

E modellek egyikén vagy másikán szkrineléssel nyert eredmény bizonyos valószínűséggel vonatkoztatható az emberben és anti humánus férgek háziállatokban élősködő féregfajokra. Igy pl. Laboratóriumunkban fonálféreg- és galandféregellenes hatékonyságra szkrinelünk.

Modellként a következő fajokat választottuk: két fonálféregfajt, a Nippostrongylus brasiliensist patkányban.

Tartalomjegyzék

A gazdaként használt laboratóriumi egér és patkány könnyen kezelhető, olcsó és kisméretű állat. A szkrinelendő vegyületből laboratóriumi egerek helmintjai csak gramm áll rendelkezésünkre, ez a kis testsulyu állatok kezelésére elegendő. Mindhárom modellnél figyelembe veendő - részben metodikai szempontok: a vizsgálatok során hagyományos tenyészetekből szánmazó egészséges, g-os laboratóriumi egereket és g-os patkányokat, tehát f i a t a l, a fertőzés iránt nagymértékben fogékony állatokat használunk.

A fertőző dózis mértéke minden esetben csak a gazda és a féregfaj ismeretében állapitható meg: a fertőzés ne okozzon klinikai tüneteket, de elegendő féreg fejlődjék ki ahhoz, hogy az eredmények statisztikusán értékelhetők legyenek.

giardia elleni féreghajto embernek feregirto gyogyszer veny nelkul

Az adag nagyságát olyan módon állapitjuk meg, hogy az állatok életben maradjanak, de a férgek a lehető legnagyobb koncentrációjú anyaggal "találkozzanak". Ez az érték közvetlenül mutatja, hogy a kezelt állatok egyedi féregszámainak átlagértéke mennyivel csökkent a kontrollok átlagos féregszámaihoz viszonyitva.

In vivo szekunder szkrinelés. A primer szkrinelés során hatékonynak bizonyuló vegyületek további vizsgálata arra irányul, hogy a gazdasági haszonállatok férgei ellen is hatékonyak-e. E vizsgálatokhoz természetes uton fertőződött, vagy mesterségesen fertőzött gazdaállatokat lehet használni. A terepen végzett szekunder szkrinelés biztos választ ad a vegyület hatékonyságáról az illető féregfajjal szemben. Az anthelmintikumok iránt világszerte nagyon nagy a kereslet, nincs elegendő hatékony vegyület forgalomban, hazánkban sem ki elégítő ebben a vonatkozásban a helyzet.

A közelmúltban már a hazai gyógyszergyárak részéről is felmerült az az igény, hogy az laboratóriumi egerek helmintjai előállított vegyületek hatásvizsgálatát féregmodelleken is el kell ene végezni ben el is kezdtük e vizsgálatokat és azóta folyamatosan végezzük azokat. A Helmintológiai Kutató Laboratóriumban folyó ilyen irányú munkánkról gazda-féregmodellként részletezve a következőkben számolok be.

A féreg fejlődésmenete. A fertőzés alkalmával a bőr alá fecskendezett fertőző lárvák a véráram utján 72 órán belül eljutnak a tüdőbe. Laboratóriumi egerek helmintjai t t a légutakba vándorolnak, majd a légcső és a garat utján az emésztőtraktusba kerülnek.

Rendszerint a fertőzés utáni 4.

soliter fejlesztési ciklus pinworms gyermekeknél tünetek

A fertőzöttség a patkányokban a fertőzést követő A naponta gyűjtött bélsarat csapviz hozzáadásával dörzsmozsárban pépszerüvé dörzsöljük, miközben sterilizált tőzeget is adunk hozzá a felület növelése és a lárvák jobb oxi génellátása céljából. Az igy kapott pépet szürőpapirkorongra e- gyenletesen felkenjük és Petri-csészében gyengén laboratóriumi egerek helmintjai szivacsra helyezzük. Az igy elkészitett kultúrát 28 C-on tartjuk, ezen a hőmérsékleten 6 nap alatt kifejlődnek és hétig fertőzőképesek maradnak a 3.

130718 egerek lakasban

Felhasználás előtt a lárvákat ugy nyerhetjük ki a kultúrából, hogy a szürőpapirt felkent oldalával lefelé forditva selyemszitára tesszük és C-u csapvizbe helyezzük; a mozgó lárvák a szitán keresztül perc alatt a vizbe vándorolnak. A lárvaszuszpenziót szűréssel, majd alacsony fordulatszámú centrifugálással laboratóriumi egerek helmintjai t i s z t i t j u k. A szuszpenzió lárvatartalmát higitásos módszerrel, sztereomikroszkóp laboratóriumi egerek helmintjai, szoros nagyitással állapítjuk meg.

Parasitologia Hungarica (Budapest, ) | Könyvtár | Hungaricana

Ezek után a szuszpenziót ugy higitjuk, hogy 0,1 vagy 0,2 ml-ben legyen a fertőző dózisként használt lárva. A fertőzés ideje alatt a lárvák egyenletes eloszlását keveréssel biztositjuk, hogy ne ülepedjenek le az edény aljára.

Ezután következik a vizsgálandó vegyület megfelelő adagjának nyelőcsőszondán át való beadása.

milyen élelmiszerek tilosak a giardiasis esetén

A kezelés időpontját az szabja meg, hogy a vegyületnek a lárvák vagy a k i f e j l e t t férgek elleni hatékonyságát kivánjuk megvizsgálni. A lárvák elleni hatásvizsgálat alkalmával a fertőzést követő napon - amikor a lárvák még nem jutottak el a tüdőbe - a kifejlett laboratóriumi egerek helmintjai elleni hatékonyság vizsgálatakor pedig a fertőzés utáni 7.

Hogyan kéne megölni a kísérleti egereket?

A fertőzött és kezelt patkányokat mindkét esetben a fertőzést követő 9. A vékonybelet kiemeljük, hosszanti irányban felvágjuk, kb.

Hogyan kéne megölni a kísérleti egereket? Pesthy Gábor

A poharat egy órán laboratóriumi egerek helmintjai 37 C-u vízfürdőben tartjuk. Ezalatt a férgek a béltartalomból a pohár aljára laboratóriumi egerek helmintjai. A féregszámot állategyedenként a következőképpen állapitjuk meg: 50 ml-es mérőhengerbe gondosan átmossuk az izolátumot, majd a hengert az es j e l i g feltöltjük élettani konyhasóoldattal, alapos felkeverés után 10 ml-t pipettával felszivunk és az ebben található férgek számát kis nagyítással megállapítjuk és öttel szorozzuk.

Közben arra is k i terjed a figyelmünk, hogy a férgek ivararányában mutatkozik e eltolódás. A kezelt csoportokban öt-öt, a kontrollcsoportokban t i z - t i z patkányt használunk f e l.

Ezen a modellen összehasonlításképpen egy kiváló anthelmintikuiriot, a tiabendazolt négyféle dózisban alkalmaztuk. Orális fertőzést követően a fertőzőképes lárvák eljutnak a vékonybél felső szakaszába i l l.

Előfordulása[ szerkesztés ] A házi egér gyakorlatilag Északnyugat- AfrikaSpanyolország és Kelet-Ázsia sztyeppjeiről és félsivatagaiból származik. A lakóházak közvetlen közelében mindenütt megtalálható. Az Arktisz és az Antarktisz területén, valamint néhány esőerdő borította területen ahol emberek sem laknak - a házi egér nem telepedett meg.

A fertőzést követő A peték a fertőzés utáni A petetermelés a napon éri el a maximumot, hétig magas marad, majd fokozatosan csökken. A fertőzöttség az egerekben hónapig is fennmarad. A lárvatenyésztéshez szükséges nagy mennyiségű pete nyeréséhez az egereket lárvával fertőzzük, igy a fertőzést követő Ettől laboratóriumi egerek helmintjai gyűjtjük az egerek bélsarát.

  • MATARKA - Cikkek listája
  • Parazita kezelés előadás
  • Giardia la bebélusi de 8 luni
  • Эволюция и наука пришли к одному и тому же ответу, только вот дитя природы просуществовало гораздо дольше.

A bélsárkulturát azonos módon készitjük, laboratóriumi egerek helmintjai a N. Az ott l e i r t eljárástól csupán annyiban térünk el, laboratóriumi egerek helmintjai 22 C-on t a r t juk a tenyészetet. Ezen a hőmérsékleten 6 nap alatt kifejlődnek a fertőzőképes lárvák.

A A lárvaszámolást közvetlenül a fertőzés előtt végezzük, higitásos módszerrel.

Házi egér – Wikipédia

Az egereket lárvával szondán át fertőzzük. Mivel ezen a modellen csak a k i f e j l e t t férgek elleni hatékonyság megállapítására végzünk szkrinelést, a vizsgálandó vegyülettel csak a fertőzést követő napon kezelünk.

Parazita ellenes szerek Anthropozoonosis, vágóhídi szűrővizsgálat Antibiotikum érzékenység, Trichomonas vaginalis, Neisseria gonorrhoeae Antilymphocyta savó, immunsupressió egérben, Nippostrongylus brasiliensis ellen Antiparazitikumok, humán, hatásmechanizmusa 85 Antiparazitás vegyületek vizsgálata Antithymocita savó, immunsupressiv és lymphotoxicus hatás, patkány, Nippostrongylus brasiliensis Apis mellifica, diklórvosz hatása 26 Apodemus-fajok galandférgei, Magyarország ARADI Mátyás Pál, in memóriám 2 54 Argasidae, denevérekből, Magyarország 13 Arvalin, védekezés mezei pocok ellen Ascariasis, humán, ductus choledochusban 2 Ascariasis, humán folyt. B, phoxini sp. Sumetrolim kipróbálása toxoplasmosisban Toxocara canis, lárvák vándorlása 38 T. Tarsonemidae-fajok, Jugoszlávia 1 09 mételyei, Bakony-hg.

A kezelést követő 4.